摘要gydF4y2Ba

尤金尼亞取代巴西橡膠樹gydF4y2Ba林。在當地被稱為Grumixama，是一種在巴西商業開發不足的桃金娘科植物。本研究旨在通過高效液相色譜法鑒定和定量該品種果實中的維生素C、類胡蘿卜素、花青素、類黃酮和酚酸等生物活性化合物。食用部分維生素C含量為18.75 mg。100克gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}認為這種水果富含這種生物活性化合物。共鑒定了8種類胡蘿卜素，其中以β-隱黃質為主，含量為22.3 μ ggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}高到足以認為這種水果是類胡蘿卜素的新來源。另外,4837.21毫克。100克gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}大部分花青素是從冷凍幹燥的果皮中獲得的。此外，在葛蘭果皮、果肉和種子中分別鑒定出10種、9種和7種酚類化合物。結果表明，格魯木果實具有開發利用的潛力，具有開發創新保健產品的潛力。gydF4y2Ba

關鍵字gydF4y2Ba

花青素;桃金娘科;β隱黃質;酚類化合物gydF4y2Ba

簡介gydF4y2Ba

桃金娘科是巴西被子植物科中最重要的科之一。然而，盡管桃金娘科植物很重要，但很少有植物被開發;其中一個未被開發的物種是gydF4y2Ba尤金尼亞取代巴西橡膠樹gydF4y2Ba林。通常被稱為grumixama。gydF4y2Ba

這種植物原產於大西洋森林，是一種中等大小的樹木，對氣候變化具有很強的抵抗力，產於巴西北部巴伊亞州南部到南部的聖卡塔琳娜州。它的花是白色的，很香，有濃密而狹窄的花冠。這種品種從9月底到11月開花，果實通常在11月和12月成熟。它每年生產大量水果，但由於缺乏商業生產，沒有關於其生產率的數據。gydF4y2Ba

的成果gydF4y2Ba大腸取代巴西橡膠樹gydF4y2Ba林。可食用，有三個品種，根據他們的顏色:紅色，紫色(或黑色)和黃色或白色[1]。它的果肉很厚，顏色很淺，非常甜多汁，通常入口即化，有一種類似櫻桃的味道，這也是它又被稱為巴西櫻桃的原因。對其果實及其活性成分的鑒定研究較少。九種花青素已經在格魯明果[2]中被鑒定出來。的水果gydF4y2Ba大腸取代巴西橡膠樹gydF4y2BaInfante等人研究了其酚類成分以及抗氧化和抗炎活性，沒有描述其他生物活性物質的評價。最近Siebert等人也評估了[4]的酚類成分和生物活性，但僅從葉提取物中提取。這種研究很重要，因為除了創造與保護生物多樣性有關的新的健康產品外，還可能發現生物活性化合物的新來源並培養對其商業化的興趣。gydF4y2Ba

Grumixama已經在當地被消費。這種水果有少量的商業生產，被高級飯店使用。由於它的形狀、顏色和味道，它是一種漿果水果。gydF4y2Ba

這項工作旨在幫助人們了解很少被開發的桃金娘科物種的功能價值，gydF4y2Ba大腸取代巴西橡膠樹gydF4y2Ba,林。被稱為grumixama。這項研究是專門針對黑色品種的，旨在識別和量化具有抗氧化潛力的化合物，如類胡蘿卜素，類黃酮，酚酸，維生素C和花青素在整個水果中。gydF4y2Ba

材料和方法gydF4y2Ba

描述和樣品製備gydF4y2Ba

2014年12月(夏季)，在巴西裏約熱內盧de Janeiro的Barra da Tijuca地區(南緯23°00′18.8”，南緯43°25′20.9”)采集Grumixama果實(4公斤)(圖1a-1c)。植物學鑒定是由巴西巴西農村聯邦大學植物學研究所的教授兼研究員馬塞洛·達·科斯塔·索薩博士完成的。該物種的憑證標本已存放在巴西農村聯邦大學植物標本室，編號為RBR 16004。gydF4y2Ba

圖1 (a, b, c):gydF4y2Ba在它的自然棲息地，它的花和果實gydF4y2Ba

采集後，立即選取成熟果實，分成3個樣品，平均每個樣品300個果實。洗淨後，將格魯米沙馬果實的果皮、果肉和種子分離，碾碎，稱成三份(每份1克)，用於含水量分析、類胡蘿卜素、糖、抗壞血酸(維生素C)、類黃酮和酚酸。花青素分析使用冷凍幹燥的果皮(冷凍幹燥機L101，巴西聖保羅Liotop)進行。gydF4y2Ba

化學物質和標準gydF4y2Ba

乙腈、丙酮、乙酸乙酯、甲醇、甲基叔丁基和石油醚從Tedia采購gydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba(俄亥俄州，美國)，而甲酸(純度=98-100%)從默克公司(Darmstradt，德國)獲得。所有溶劑均為HPLC級。磷酸(純度=85%)也從Tedia獲得gydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba(美國俄亥俄州)。葡萄糖、果糖和蔗糖(純度為95%)、抗壞血酸(純度為99%)、類黃酮和酚酸(純度為95%)均購自Sigma Aldrich®(EUA)。標準的類胡蘿卜素和花青素從巴西Embrapa食品技術高效液相色譜實驗室(裏約熱內盧de Janeiro, Brazil)的天然來源中分離，純度為>95%。超純水(0.054 μ S cmgydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba})從Millipore公司(Milford, MA, USA)的Milli-Q係統中獲得。質譜級溶劑用於高效液相色譜與質量檢測(LiChrosolv Merck)。gydF4y2Ba

理化分析gydF4y2Ba

為了建立每個水果的平均重量，分別稱了格魯米沙馬水果的重量。將果實部分(種子、果皮和果肉)分離，並分別稱其重量以確定其含量百分比(%)。這一過程在六種水果上重複。gydF4y2Ba

每個樣品10個水果被分離在三個玻璃瓶中，分別為樣品A、B和c。水果的食用部分(果皮+果肉)被均質，用於可溶性固形物(SST)和總酸度測試(ATT)。這種關係也被稱為“RATIO”(可滴定酸度的白度的劃分)被用來驗證原料是否成熟，從而產生具有感官接受度和質量[5]的產品。gydF4y2Ba

可溶性固形物含量通過數字折光儀(Atago PAL-1模型)直接讀取三個樣品(每個樣品一個讀數)，刻度為°Brix[6]。gydF4y2Ba

總酸度分析時，每個樣品稱重5克，放入100ml燒杯中，然後加入20ml超純水。在檢查初始pH值後，將樣品攪拌並在自動滴定器中滴定(metrhm型785 DMP Titrino)，加入0.05 M氫氧化鈉pH值8.1[6]。gydF4y2Ba

水果部分的水分分析在105°C的烘箱中進行。結果以百分比(%)表示。gydF4y2Ba

分析類胡蘿卜素gydF4y2Ba

類胡蘿卜素的提取根據rodrigezamaya[8]進行。以10%的氫氧化鉀(KOH)溶液溶於甲醇(10:90,v/v)，在室溫下，在黑暗中反應16 h，對醚提取物進行溶劑萃取和皂化。gydF4y2Ba

先前稱量的樣品轉移到瓷臼中，用3克矽藻土和20毫升丙酮浸漬。混合物通過帶燒結板的玻璃漏鬥真空過濾。重複提取過程，直到樣品不再顯示類胡蘿卜素的特征顏色。將丙酮提取液定量轉移到含有30 mL石油醚的分離漏鬥中，用200 mL超純水衝洗至少5次。醚提取物轉移到琥珀燒瓶與等體積的氫氧化鉀(KOH) 10%甲醇(10:90,v /v)。16小時後，將體積轉移到分離器漏鬥中，用超純水衝洗。在無水硫酸鈉和玻璃棉漏鬥的幫助下，分離漏鬥中剩餘的醚溶液被轉移到25毫升容量瓶中。最後，采用紫外- v分光光度計，紫外-1800型92(日本京都島津株式會社)，石油醚為空白，在450 nm下測定樣品提取物中總類胡蘿卜素的含量。采用Beer-Lambert定律計算類胡蘿卜素總含量。gydF4y2Ba

根據Pacheco等人[9]使用Waters進行色譜分析gydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba高效液相色譜係統，帶有光電二極管陣列檢測器gydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba模型996年授權gydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba軟件,CgydF4y2Ba_30.gydF4y2Ba柱(S-3類胡蘿卜素，4.6 mm × 250 mm, YMCgydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba)，柱溫33℃，流動相采用梯度洗脫方式:甲醇(A)和甲基叔丁基醚(B)，以80%的A和20%的B開始;0.5分鍾75% A和25% B;15分鍾15% A和85% B;15.50分鍾10% A和90% B;16.55分鍾，直到最終80% A和20%，流量0.8 mL.mingydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}注入量為15 μ L，運行時間為28 min。gydF4y2Ba

類胡蘿卜素的鑒定是基於它們的保留時間和吸收光譜紫外-可見gydF4y2Ba_{馬克斯gydF4y2Ba}，與基於實驗室分離的分析標準的校準曲線的類胡蘿卜素標準的保留時間相比，純度大於99%[9]。gydF4y2Ba

根據轉化係數計算維生素A原，6µg的β-胡蘿卜素相當於1µg的視黃醇等量物(RE)，其活性為β-胡蘿卜素100%，β-隱黃質50%，α-胡蘿卜素[10]。gydF4y2Ba

抗壞血酸分析(維生素C)gydF4y2Ba

用於抗壞血酸分析的方法根據Rosa等人(2007)[11]。用10 mL 0.05 M H提取樣品gydF4y2Ba_2gydF4y2Ba所以gydF4y2Ba_4gydF4y2Ba在超聲波浴中浸泡10分鍾。提取後，樣品被過濾，並轉移到1.5 mL的小瓶中。色譜分析在配備Waters®Alliance 2695係統中進行gydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba2996光電二極管陣列(PDA)檢測器(243.9 nm)和AminexgydF4y2Ba^TMgydF4y2BaBioRad HPX-87H色譜柱(300 × 7.8 mm)。自動進樣器溫度保持在10℃，以0.7 mL.min的流速等速泵入0.05 M硫酸流動相gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}．采用外部標準化方法進行量化。gydF4y2Ba

糖分析gydF4y2Ba

糖的提取按Macrae[12]進行。用1 g樣品和10 mL超純水在超聲波浴中提取糖，20分鍾後過濾提取液。gydF4y2Ba

這是由Waters高效液相色譜儀模型聯盟進行分析gydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba2690/5, Waters折射率探測器型號2410，賦能gydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba軟件和一台ZorbaxgydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba碳水化合物安捷倫柱(30 cm × 4.6 mm)。所用流速為1.0 mL.mingydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}，注射體積為20µL，等速洗脫模式為乙腈:水(75:25 v/v)流動相，運行時間為20 min。gydF4y2Ba

糖的定量是通過外部標準化進行的，基於果糖、葡萄糖和蔗糖的商業分析標準的校準曲線。gydF4y2Ba

花青素的分析gydF4y2Ba

花青素分析隻使用冷凍幹果皮。提取花青素使用0.02 g獲得的粉末和10 mL甲醇:甲酸溶液(90:10 v/v)在超聲波浴中，隨後離心，直到樣品[13]變色。然後，用100µL的5%甲酸溶液在水中:甲醇(90:10 v/v)稀釋。分析是在Waters上進行的gydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba聯盟2695係統，使用沃特斯gydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba2996光電二極管陣列檢測器(在210-600 nm掃描，520 nm定量)，帶ThermogydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba科學CgydF4y2Ba_18gydF4y2BaBDS (100 mm × 4.6 mm;2.4µm)柱，流速1.0 mL mingydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}柱溫為40℃，注射體積為20µL。洗脫方式梯度為5%甲酸(相A)和乙腈(相B)，以相A的95%和相B的5%開始洗脫;15分鍾87% A和13% B;16.5分鍾86% A, 14% B;18分鍾95% A和5% B;流速1.0 mL.mingydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}，注射量為20 μ L，運行時間為20分鍾。gydF4y2Ba

主要花青素的定量是通過外部標準化進行的，基於實驗室[14]分離的分析標準所做的校準曲線。鑒定的主要花青素經質譜儀確證。通過比較保留時間和紫外-可見吸收光譜對其他花青素進行了鑒定gydF4y2Ba_{馬克斯gydF4y2Ba}用葡萄皮提取花青素，這是一種已經鑒定為花青素的基質，並與文獻進行比較。gydF4y2Ba

類黃酮和酚酸的分析gydF4y2Ba

遊離酚酸的分析方法參見Pérez-Jimenéz[15]。用4ml甲醇:水(50:50 v/v, pH 2)提取樣品，然後機械攪拌1小時，離心(5000 G) 10分鍾。收集上清液(提取液1)。然後，4ml丙酮:水(70:30;在殘渣中加入V / V)，重複機械攪拌和離心步驟。收集上清液(提取液2)。將3 mL上清液(提取液1和提取液2)混合並轉移到1.5 mL的小瓶中用於色譜注射。gydF4y2Ba

固體樣品殘渣按照fretto等人描述的方法進行水解酚的提取。堿性水解在5 mL含1%抗壞血酸的2 M NaOH溶液和10 mM EDTA中進行。在61-63°加熱60分鍾後，將該溶液添加到樣品中。在此之後立即加入1.5 mL的6 M HCl進行酸水解。該溶液旋轉10秒，冷卻到室溫，然後離心(2700 rpm) 10分鍾。收集上清液，加入6.5 mL乙酸乙酯。分離有機相，用乙酸乙酯重複萃取。有機組分在氮氣(NgydF4y2Ba_2gydF4y2Ba)，然後用甲醇稀釋，進行色譜分析。gydF4y2Ba

用高效液相色譜儀對遊離酚酸和水解酚酸進行分析gydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba2690/5型，一輛沃特斯gydF4y2Ba^TMgydF4y2Ba2996型光電二極管陣列探測器(270,310和370 nm)，使用Thermo Hypersil BDS CgydF4y2Ba_18gydF4y2Ba柱(100 × 4.6 mm × 2.4 μ m)， 1.0 mL.mingydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}流動，注射量為10µL，運行時間為28 min，洗脫方式梯度采用0.15%磷酸(95%)-乙腈(5%)水溶液。在12.00 min乙腈濃度增加到12%，18.00 min乙腈濃度增加到20%，20.00 min乙腈濃度增加到50%。乙腈濃度維持在5%到25.00 min，然後恢複到初始條件(5%)。黃酮類和酚酸的定量采用外標法。gydF4y2Ba

結果與討論gydF4y2Ba

理化分析gydF4y2Ba

每個果實的平均重量為4.5±0.5 g。結果表明:桃果各部位占果肉的71%，果皮的17%，種子的12%。gydF4y2Ba

果實成熟分析隻對果實的食用部分(果皮+果肉)進行。總酸度為13.21±0.25% (w/w)，總可滴定酸度(檸檬酸含量)為0.92±0.02% (w/w);STT/ATT (ratio)為14.13±0.25,SST為13.07±0.12°Brix。gydF4y2Ba

水分分析表明，果皮平均水分為88.4±0.7% (w/w);果漿為90.7±0.6% (w/w)，種子為49.9±1.0% (w/w)。gydF4y2Ba

果實中果肉含水量(90.7%)和果皮含水量(88.4%)高於Arévalo等[17]的結果gydF4y2Ba大腸取代巴西橡膠樹gydF4y2Ba,林。(果肉83.9%，果皮77.4%)，但低於camu-camu果肉(92.7%)[18]和uvaia[19](94.4%)。gydF4y2Ba

類胡蘿卜素的分析gydF4y2Ba

種子:gydF4y2Ba類胡蘿卜素的初始結果為17.38µggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}．然而，在注入到色譜儀後，由於葉綠素的存在，觀察到需要皂化，通過與文獻[20]的數據比較兩個峰的UV/VIS光譜確定了葉綠素。gydF4y2Ba

葉綠素在450nm處有一個強烈的能量吸收帶，這最終高估了類胡蘿卜素的結果。皂化去除所有葉綠素後，類胡蘿卜素得到3.64µg.ggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}．因此，初始值實際上一定是全部葉綠素。這一結果促使我們決定不再對剩下的重複進行分析。對格魯明種子皂化提取物進行了色譜分析，盡管濃度低;葉黃素的存在(0.82 μ ggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}β-隱黃質(1.40µg.g .)gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}α-胡蘿卜素(0.25µg.ggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}β-胡蘿卜素(0.82µggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba})被發現。gydF4y2Ba

紙漿和皮:gydF4y2Ba由於β隱黃質的酯化存在，必須對果實的果肉和果皮部分進行皂化。gydF4y2Ba

色譜分析鑒定出果肉和果皮中的8種類胡蘿卜素:紫黃素、葉黃素、玉米黃質、β-隱黃素、13-順式β-胡蘿卜素、α-胡蘿卜素、β-胡蘿卜素和9-順式β-胡蘿卜素(圖2)。gydF4y2Ba

圖2:gydF4y2Ba格魯木果肉和果皮提取物的類胡蘿卜素色譜圖(兩者具有相同的類胡蘿卜素圖譜)。盟:吸光度單位gydF4y2Ba

皂化步驟後進行分析，結果如表1所示。gydF4y2Ba

	皮gydF4y2Ba	紙漿gydF4y2Ba
類胡蘿卜素gydF4y2Ba	內容(µg.ggydF4y2Ba－1gydF4y2Ba）gydF4y2Ba	內容(µg.ggydF4y2Ba－1gydF4y2Ba）gydF4y2Ba
總計gydF4y2Ba	55.94±1.85gydF4y2Ba	26.54±0.62gydF4y2Ba
黃質gydF4y2Ba	0.78±0.08gydF4y2Ba	0.09±0.02gydF4y2Ba
葉黃素gydF4y2Ba	4.39±0.51gydF4y2Ba	0.41±0.01gydF4y2Ba
玉米黃質gydF4y2Ba	1.06±0.11gydF4y2Ba	0.59±0.05gydF4y2Ba
β隱黃質gydF4y2Ba	39.64±1.35gydF4y2Ba	17.47±0.83gydF4y2Ba
α-胡蘿卜素gydF4y2Ba	0.17±0.03gydF4y2Ba	0.21±0.01gydF4y2Ba
13 cisβ-胡蘿卜素gydF4y2Ba	0.79±0.02gydF4y2Ba	0.23±0.02gydF4y2Ba
β-胡蘿卜素gydF4y2Ba	4.43±0.05gydF4y2Ba	4.12±0.28gydF4y2Ba
9 cisβ-胡蘿卜素gydF4y2Ba	0.38±0.02gydF4y2Ba	0.47±0.06gydF4y2Ba

表1:gydF4y2Ba皂化提取物的果肉和果皮中總類胡蘿卜素的平均值(µggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba})．結果報告為平均值±標準差gydF4y2Ba

β-隱黃質和β-胡蘿卜素這兩種主要的類胡蘿卜素分別占格魯馬果皮類胡蘿卜素總量的71%和8%，在果肉類胡蘿卜素總量中分別占66%和18%。兩者都是維生素A的前體。gydF4y2Ba

很少有研究表明深色皮膚的水果中存在類胡蘿卜素。這可能是因為它們果皮的深色最終掩蓋了類胡蘿卜素的特征顏色。然而，花青素的分離在類胡蘿卜素提取的水:醚分離步驟是可見的。紫色留在水中，非極性類胡蘿卜素遷移到醚相。gydF4y2Ba

枸杞果實可食部分的µg約為32.90gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}總類胡蘿卜素含量為22.27 μ ggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}β的玉米黃質。在Oliveira等人進行的研究中，[21]約38 μ ggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}β-隱黃質是該果實類胡蘿卜素的主要來源。為了考慮一個水果作為類胡蘿卜素的來源，它必須包含至少20個µggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}一種特殊的類胡蘿卜素[8]。gydF4y2Ba

因此，grumixama可以被認為是β-隱黃質類胡蘿卜素的新來源，增強了這種水果作為抗氧化劑和維生素a原的價值，因為它是一種活性類胡蘿卜素。gydF4y2Ba

維生素CgydF4y2Ba

格魯莫沙瑪各組分中維生素C含量均為5.79±0.15 mg。100克gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}皮;10.55±1.35 mg。100克gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}在紙漿;3.82±0.09 mg。100克gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}的種子。gydF4y2Ba

目前尚無用高效液相色譜法測定巴西乳杆菌中抗壞血酸含量的文獻資料。在巴西傳統飲食中，橙子被認為是維生素C的主要來源，其含量約為60毫克。100克gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}根據巴西食物成分表[22]grumixama果實的可食用部分含有18.75毫克。100克gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba}，大約是這個量的1/3。世界衛生組織建議每天攝入45毫克維生素C [23];因此，100克可食用部分的研究水果相當於41.7%的RDI(推薦每日攝入量)。任何含有每日所需營養素10%或以上的食物都被認為是這種營養素的良好來源;提供20%這種營養素的食物被認為是豐富的。因此，grumixama可以被認為富含維生素C[24]。gydF4y2Ba

糖分析gydF4y2Ba

果糖、葡萄糖和蔗糖存在於果實種子中，而果糖和葡萄糖隻存在於果實的果皮和果肉中。gydF4y2Ba

結果表明:果肉中果糖含量為3.13±0.21% (w/w)，葡萄糖含量為2.84±0.21% (w/w);果皮中果糖含量為4.18±0.15 % (w/w)，葡萄糖含量為3.68±0.17% (w/w);種子中果糖含量為1.13±0.04% (w/w)，葡萄糖含量為1.01±0.04% (w/w)，蔗糖含量為0.36±0.05% (w/w)。gydF4y2Ba

根據巴西食品成分表(TACO, 2011) [22]， grumixama水果可食用部分的總糖含量(7.4%)略高於草莓(6.8%)，但低於蘇裏南櫻桃(10.2%)。gydF4y2Ba

果糖濃度在所有餾分中均高於葡萄糖濃度。還原糖(果糖和葡萄糖)的存在是影響生水果或加工水果[25]是否被接受的一個質量因素。gydF4y2Ba

花青素的分析gydF4y2Ba

用質譜法對花青素1進行質譜分析(圖3)，得到了一個m/z為465 u的分子離子，即飛豆苷-3- o -葡萄糖苷;用質譜法(Trap和轉移的能量增加到6.0 V)對注射物進行質譜分析，得到了一個m/z為303 u的糖豆苷。gydF4y2Ba

圖3:gydF4y2Ba桂皮提取物花青素的色譜和紫外-可見光譜分析。峰1和譜A:飛蛾苷-3- o -葡糖苷;2:峰值cyanidin-3-O-galactoside;峰3和譜B:花青素-3- o -葡萄糖苷;4:峰值petunidin-3-O-glucoside;峰5:天竺葵素衍生物;6:峰值peonidin-3-O-glucoside;峰7:花青素未鑒定。盟:吸光度單位gydF4y2Ba

用MS-MS進行了花青素3(圖3)的注射確認，得到了一個m/z為449 u的離子，對應於花青素- 3- o -葡萄糖苷;轉移和捕獲能量增加到6.0 V有利於花青素的破碎，因此檢測到的氰化苷元的m/z為287 u，這是由於一個糖分子的損失。gydF4y2Ba

本研究共檢測到7種花色苷。在這些花青素中，Flores et al.[2]已經報道了三種花青素:飛蛾花苷-3- o -葡萄糖苷、藍花苷-3- o -半乳糖苷和藍花苷-3- o -葡萄糖苷。gydF4y2Ba

花青素1經鑒定為delphinidin-3-O-glucoside(與葡萄果皮提取物中分離的花青素進行比較和質譜分析證實)。花青素2表現為λ吸收帶gydF4y2Ba_{馬克斯gydF4y2Ba}278.3和517.7 nm，說明它是一種花青素。通過與Flores等人[2]的研究和紫外-可見吸收光譜的比較，該物質被鑒定為花青素-3- o -半乳糖苷gydF4y2Ba_{馬克斯gydF4y2Ba}研究了葡萄果皮提取物中花青素的保留時間。花青素3經鑒定為cyanidin-3-O-glucoside(經與葡萄果皮提取物中花青素的比較和質譜分析證實)。花青素4呈現λgydF4y2Ba_{馬克斯gydF4y2Ba}吸收波段分別為271.2和520.1 nm，表明該花青素為佩蝶寧。通過紫外-可見吸收光譜的比較gydF4y2Ba_{馬克斯gydF4y2Ba}通過對葡萄果皮提取物中花青素保留時間的測定，鑒定該物質為petunidin-3- o -葡萄糖苷。花青素5在499 nm處有最大吸收帶，是天竺葵素的衍生物。天竺葵素吸收帶是唯一靠近500 nm的吸收帶，在Hong等人[26]的文獻中有報道。花青素6在280.7和516.5 nm處吸收最大，表明該花青素為芍藥苷。與紫外-可見吸收光譜進行比較gydF4y2Ba_{馬克斯gydF4y2Ba}通過對葡萄皮提取物中花青素保留時間的測定，鑒定其為芍藥苷-3- o -葡萄糖苷。第7種花青素未被鑒定。花青素檢測濃度如表2所示。gydF4y2Ba

花青素(毫克。100克gydF4y2Ba－1gydF4y2Ba）gydF4y2Ba
Dp-3-glugydF4y2Ba	Cy-3-galacgydF4y2Ba	Cy-3-glugydF4y2Ba	Pt-3-glugydF4y2Ba	Pg衍生物gydF4y2Ba	Pn-3-glugydF4y2Ba	ACN 7gydF4y2Ba	總單體的雨gydF4y2Ba
949.06±20.13gydF4y2Ba	27.89±0.77gydF4y2Ba	3729.50±72.75gydF4y2Ba	22.02±1.06gydF4y2Ba	9.09±0.43gydF4y2Ba	91.36±1.30gydF4y2Ba	8.30±1.34gydF4y2Ba	4837.21±91.43gydF4y2Ba

表2:gydF4y2Ba花青素濃度(mg。100克－1）found in freeze-dried grumixama peel. Results reported are mean values ± SD
Dp-3-glu: delphinidin-3-O-glucoside;Cy-3-galac: cyanidin-3-O-galactoside;Cy-3-glu: cyanidin-3-O-glucoside;Pt-3-glu: petunidin-3-O-glucoside;Pgderivate: pelargonidinderivate;ACN:花青素gydF4y2Ba

[14]方法適用於單體花青素。這兩種主要花青素的含量相當於總花青素的96%以上。gydF4y2Ba

鑒定出的主要花青素是飛豆苷-3- o -葡萄糖苷和藍靛苷-3- o -葡萄糖苷，它們的主要濃度是相同的，存在於香柏木(Myrciariacauliflora, Berg)的果皮中，是一種具有有趣功能潛力的水果。根據Lequinste等人[27]的研究，卡皮中的花青素具有很強的抗氧化作用和健康益處，如對肥胖和胰島素抵抗。gydF4y2Ba

冷凍幹燥的格魯馬果皮花青素含量較高(4837.2 mg)。100克gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba})比Leite-Legatti等人(2012)發現的[28]對jabuticaba凍幹皮(2598.32 mg.100g)的影響要大gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba})，被認為富含這種酚類化合物。因此，格魯魯可被認為是花青素的新來源，為這種尚未被商業開發的水果增加了價值。gydF4y2Ba

黃酮類化合物和酚酸譜分析gydF4y2Ba

鑒定出的遊離酚類化合物為:格魯慕斯種子果皮和果肉中的兒茶素、鞣花酸、蘆丁、異槲皮素、槲皮素;格魯慕斯種子中的沒食子酸、鞣花酸、丁香酸、蘆丁、兒茶素和對羥基苯甲酸。gydF4y2Ba

樣品的水解促進了酚類化合物的更完整的表征。經水解鑒定，果皮中含有沒食子酸、原兒茶酸、對羥基苯甲酸、香草酸、鞣花酸、蘆丁和異槲皮素;果肉中的沒食子酸、原兒茶酸、對羥基苯甲酸、鞣花酸、蘆丁;種子中的沒食子酸、原兒茶酸、對羥基苯甲酸、香草酸和鞣花酸。圖4顯示了在格魯尼沙瑪果皮中發現的所有酚類化合物。gydF4y2Ba

通過與市售標準品保留時間比較和在270 nm、310 nm和370 nm處的吸收光譜分析，對黃酮和酚酸進行了鑒別。由於沒有足夠質量的標準溶液製劑，異槲皮素沒有被定量。得到的濃度見表3。gydF4y2Ba

圖4:a)gydF4y2Ba格魯馬果皮水解前酚類化合物的色譜分析gydF4y2Bab)gydF4y2Ba葛蘭果皮水解後酚類化合物的色譜圖gydF4y2Ba

表3:格魯明中酚類化合物的濃度(mg.g .)gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba})．結果報告為平均值±標準差gydF4y2Ba

鞣花酸的值(0.26 mg.g-1)與Reynertson等人發現的值相同gydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba})，而槲皮素的濃度(0.019 mg.ggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba})低於同作者獲得的0.04 mg.ggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba})．Reynertson等人發現了AlsorutingydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba})，但低於0.49 mg.ggydF4y2Ba^{－1gydF4y2Ba})發現於格魯摩可食用部分。gydF4y2Ba

除上述表征的酚類化合物外，在桃果果肉中檢測到39個未識別的峰，在種子中檢測到31個未識別的峰，在果皮中檢測到45個未識別的峰。所有這些峰吸收光譜UV-VisgydF4y2Ba_{馬克斯gydF4y2Ba}呈現酚類吸收帶特征;但是，由於缺乏分析標準，無法確定它們。酚類化合物主要以可溶性和不溶性結合物的形式存在，與糖或細胞壁的結構成分[30]共價結合。通過分離這些物質和使用其他技術，如質譜和核磁共振，試圖闡明這些化合物的結構，鑒定這些物質是可能的。gydF4y2Ba

結論gydF4y2Ba

格魯穆沙瑪水果表現出豐富的多樣性和高濃度的生物活性化合物，如花青素，其他類黃酮，酚酸，類胡蘿卜素和維生素cgydF4y2Ba大腸取代巴西橡膠樹gydF4y2Ba,林。是水果中最豐富的部分，在食品工業中作為添加劑或天然著色劑使用，可以促進可能的健康效益。gydF4y2Ba

根據研究結果，gydF4y2Ba大腸取代巴西橡膠樹gydF4y2Ba,林。可以被認為是一種具有潛在功能特性的優良食品。它的成分應該會刺激這種未被開發的巴西水果的生產和消費。gydF4y2Ba

參考文獻gydF4y2Ba

1. 莫雷諾PRH, Lima MELL, Sobral M, Young MCM, Lamb I等(2007)水果顏色品種的精油組成gydF4y2Ba尤金尼亞取代巴西橡膠樹gydF4y2Ba林。64年Sci阿格利司。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
2. 王曉燕，王曉燕，王曉燕，等。(2012)植物中的花青素gydF4y2Ba尤金尼亞取代巴西橡膠樹gydF4y2Ba可食用水果作為COPD治療的潛在療法。食品化學134:1256-1262。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
3. Infante J, Rosalen PL, Lazarini JG, franin M, de Alencar SM(2016)未開發的巴西本土水果的抗氧化和抗炎活性。Plos One 11: e0152974。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
4. Siebert DA, Bastos J, Spudeit DA, Micke GA, Alberton MD (2017) HPLC-ESI-MS/MS法測定葉中酚類成分及其抗炎活性gydF4y2Ba尤金尼亞取代巴西橡膠樹gydF4y2Ba．布拉斯·法瑪格27:459-465。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
5. Tressler DK, Josylin MA(1961)果蔬汁加工技術。2gydF4y2Ba^ndgydF4y2Ba版，AVI出版公司，密歇根大學，1028。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
6. AOAC(2000)方法942.15,932.14。農業化學家協會的官方方法gydF4y2Ba^thgydF4y2Ba版。華盛頓特區,1175年。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
7. AOAC(2010)國際方法990.03,993.13,997.09。AOAC國際官方分析方法gydF4y2Ba^thgydF4y2Ba版本，蓋瑟斯堡，馬裏蘭州，美國。gydF4y2Ba
8. rodrigez -amaya DB, Kimura M, Amaya-Farfan J(2008)巴西類胡蘿卜素來源:巴西表類胡蘿卜素組成的食物。巴西利亞,DF: MMA / SBF。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
9. Pacheco S, Peixoto FM, Borguini RG, Nascimento LSM, Bobeda CRR，等(2014)蔬菜基質中高效液相色譜類胡蘿卜素分析的微尺度提取方法。中國農業科學26(4):416-419。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
10. Scott KJ, Rodriguez-Amaya D(2000)維生素A原類胡蘿卜素轉換因子:視黃醇的等價物——事實或虛構。食品化學69:125-127。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
11. Rosa JS, Godoy RLO, Oiano-Neto J, Campos RS, Matta VM，等。(2007)對維生素和食物的分析和高效的分離。食品科學與技術27:837-846。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
12. Macrae R(1998)食品科學與技術-一係列專著:食品分析中的高效液相色譜。2gydF4y2Ba^ndgydF4y2Ba版，學術出版社，紐約。gydF4y2Ba
13. Brito ES, Araujo MCP, Alves RE, Carkeet C, Clevidence BA，等(2007)熱帶水果中花青素的存在:針葉果，jambolão, jussara和番石榴。農業食品化學55:9389-9394。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
14. Gouvea ACMS, Araujo MCPA, Schulz DF, Pacheco S, Godoy RLO，等(2012)用高效液相色譜法從冷凍幹燥巴西莓(Euterpeoleraceae Mart.)中分離花青素標準(花青素-3- o -葡萄糖苷和花青素-3- o -蘆丁苷)。食品科學與技術32:1-4。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
15. Perez-Jimenez J, Arranz S, Tabernero M, Diaz-Rubio ME, Serrano J，等(2008)測定植物性食品、油脂和飲料中抗氧化能力的最新方法:提取、測量和結果表達。食品研究國際41:274-285。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
16. frightto RTS, Baccan M(2012)大豆組成性酚酸的定量研究[甘氨酸max (L.)]采用高效液相色譜法(HPLC)。“巴西農業研究公司”的環境。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
17. Arevalo RP, Servignini LP, Silva LA, Maldonado CAB, Arthur V，等(2014)格魯西美拉果實中礦物質的濃度(gydF4y2Ba尤金尼亞取代巴西橡膠樹gydF4y2BaLam)。農業生態學筆記9:1-9。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
18. 前田RN，潘托雅L, Yuyama LKO, Chaar JM(2007)建立ácido ascórbico e antocianinas em néctar de camu-camu (Myrciaria dubia, H. B. k)McVaugh)。食品科學與技術27:313-316。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
19. Karwowski M, Masson M, Lenzi MK, Scheer AP, Haminiuk CWI(2013)熱帶水果的表征:流變性，穩定性和酚類化合物。食品學報42:586-598。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
20. Borrmann D, Andrade JC, Lanfer-Marquez UM(2009)大豆(Glycine max L. Merill)種子成熟過程中葉綠素降解和無色葉綠素衍生物的形成。農業食品化學57:2030-2034。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
21. Oliveira DS, Aquino PP, Ribeiro SM, Proença RP, Pinheiro-Sant 'Ana HM(2011)維生素C，類胡蘿卜素，fenólicos totais e atividade抗氧化物goiaba, manga e mamão米納斯吉拉斯州的巴西程序。科學學報33:89-98。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
22. TACO(2011)(巴西食物成分表)。gydF4y2Ba
23. 世界衛生組織和聯合國糧食及農業組織(2004年)人類營養中的維生素和礦物質需求。人2gydF4y2Ba^ndgydF4y2Ba341年版。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
24. Ministério da Saúde, Agência national de Vigilância Sanitária (2005) Resolução RDC nº269 de 22 de setembro de 2005。定義Regulamento técnico sobre ingestão diária recommended (IDR) de proteínas，維生素e minerais。指出,巴西。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
25. Lago ES, Gomes E, da Silva R (2006) Jambolan果凍產量(gydF4y2BaSyzygiumcumini拉馬克gydF4y2Ba):加工、物理化學和感官評價。食品科學與技術26:847-852。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
26. Hong V, Wrolstad RE(1990)利用高效液相色譜分離/光電二極管陣列檢測對花青素進行表征。農業食品化學38:708-715。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
27. Lenquiste SA, Batista AG, Marineli RS, Dragano RNV, Maróstica Jr MR(2012)將凍幹的jaboticaba皮添加到高脂肪飲食中增加高密度脂蛋白膽固醇，改善肥胖大鼠的胰島素抵抗。食品Res Int 49: 153-160。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
28. Leite-legatti AV, Batista AG, Dragano NRV, Marques AC, Malta LG，等(2012)Jaboticaba果皮:抗氧化化合物、抗增殖和抗突變活性。食品Res Int 49: 596-603。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
29. Reynertson KA, Yang H, Jiang B, Basile MJ, Kennelly EJ(2008) 14種紫薇科食用果實中抗自由基酚類成分的定量分析。食品化學109:883-890。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba
30. 阿科斯塔-埃斯特拉達BA, Gutiérrez-Uribe JA, Sernasaldívar SO(2014)食品中的結合酚類物質，綜述。食品化學152:46-55。［gydF4y2BaRef。gydF4y2Ba］gydF4y2Ba

在此下載臨時PDFgydF4y2Ba

條信息gydF4y2Ba

文章類型:gydF4y2Ba研究文章gydF4y2Ba

引用:gydF4y2BaNascimento LSM, Santiago MCPA, Oliveira EMM, Borguini RG, Braga ECO，等(2017)巴西Eugenia brasiliensis生物活性化合物的表征。(Grumixama)。Nutr Food technology開放訪問3(3):doi http://dx.doi。org/10.16966/2470 - 6086.146gydF4y2Ba

版權:gydF4y2Ba©2017 Nascimento LSM，等。這是一篇開放獲取的文章，根據創作共用署名許可協議(Creative Commons Attribution License)發布，該協議允許在任何媒體上不受限製地使用、分發和複製，前提是注明原作者和來源。gydF4y2Ba

出版的曆史:gydF4y2Ba

收到日期:gydF4y2Ba2017年10月11日gydF4y2Ba

接受日期:gydF4y2Ba2017年11月15日gydF4y2Ba

發表日期:gydF4y2Ba2017年11月21日gydF4y2Ba