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Jianxun歌*
美國賓夕法尼亞州好時市賓夕法尼亞州立大學醫學院微生物學和免疫學學係*通訊作者:宋建勳,美國賓夕法尼亞州立大學醫學院微生物與免疫學係,賓夕法尼亞好時,E-mail: jus35@psu.edu
多能幹細胞(PSCs)可用於獲得可再生的健康調節性T細胞(T海軍學校規則)來治療自身免疫性關節炎,因為它們能夠產生體內幾乎所有類型的細胞,包括T細胞海軍學校規則.然而,抗原(Ag)特異性T海軍學校規則從PSCs(即PSC-T海軍學校規則)仍然未知。一個正在進行的項目將確定ag特異性PSC-T的機製注冊旨在調節自身免疫性關節炎耐受性的治療。從這些研究中獲得的知識將為自身免疫性關節炎的細胞療法提供新的見解,並促進對T的基本機製的理解注冊分化。
多能幹細胞;自身免疫性關節炎;幹細胞
調節性T細胞(T海軍學校規則)是正常免疫係統不可或缺的組成部分,有助於維持外周耐受性。T海軍學校規則可下調免疫反應,對免疫穩態至關重要。它們可以作為預防和治療類風濕關節炎(RA)的關鍵效應因子[1,2]。
造血幹細胞(HSC)來源的造血祖細胞遷移到胸腺並發展成不同類型的T細胞。轉錄因子Aire(主要在胸腺髓質上皮細胞- mTECs中表達)和FoxP3在克隆缺失和T注冊選擇[3]。Aire的表達、FoxP3的上調與T注冊選擇;Aire缺陷影響自反應T細胞的負選擇,FoxP3控製著自然產生的T細胞的發育和功能海軍學校規則(元海軍學校規則)[4]。我們的實驗室已經證明了穩定的T海軍學校規則通過過表達FoxP3和bcl-xL[5]從CD4+ T細胞中分離。
大規模應用的最新進展在體外T的擴張海軍學校規則緊隨其後的是在活的有機體內這些細胞的重新注入增加了這種策略可能被成功地用於治療類風濕性關節炎(RA)[6]。雖然多克隆擴大了T海軍學校規則表現出抑製活性,抗原(Ag)特異性T海軍學校規則更能有效抑製局部自身免疫性疾病,如RA、1型糖尿病(T1D)、炎症性腸病(IBD)、過敏反應和移植物抗宿主病(GVHD)[7-11]。此外,組織/器官相關T注冊靶向穩定FoxP3的表達,避免誘導潛在的有害的全身免疫抑製[12,13]。對於T注冊免疫療法為基礎,在體外組織/器官(如滑膜)相關和非終末分化效應因子T的產生海軍學校規則為在活的有機體內回注是一種最佳的方法。然而,目前的方法在產生、分離和擴展足夠數量的這種T的能力方麵是有限的海軍學校規則從患者那裏獲得治療幹預。
T注冊基於免疫療法:
隻有少量的T海軍學校規則可從外周血單個核細胞(pmcs)中獲得。CD4和CD25已經被用來分離T海軍學校規則用於體外膨脹。CD4+CD25+ T細胞是不均勻的,包含兩種T細胞海軍學校規則和傳統效應T細胞(Teffs).目前的擴展協議激活了T海軍學校規則和Teffs,因為T需要更長的時間海軍學校規則進入細胞周期的S期,Teffs過大而不適於T海軍學校規則[14]。此外,T海軍學校規則α- cd3 + α- CD28抗體(Abs)伴或不伴rIL-2的重複刺激是否會失去抑製活性在體外.
迄今為止,還沒有一種方法證明有能力分離出整個T細胞注冊患者特異性100%的人群(目前的臨床方法)。甚至FoxP3或最近的Eos,一種被認為是識別T細胞的金標準的轉錄因子海軍學校規則,在一些活化的非調節性人類T細胞[15]中短暫表達,突出了識別和分離純T的難度注冊人口。非規範性T的過繼轉移effs和T海軍學校規則可能會加重自身免疫性疾病
CD4的基因轉導+來自帶有Ag特異性T細胞受體(TCR)[16]或嵌合Ag受體(CAR)[17]和/或帶有FoxP3的TCR的PBMCs的T細胞誘導產生抑製性T細胞群[8],並克服了Ag特異性T細胞數量有限的障礙。然而,工程T海軍學校規則表達內源性和外源性多克隆TCRs,這降低了其治療潛力(目前的實驗方法)。此外,TCR錯配是一個關於TCR基因轉移T安全性的擔憂海軍學校規則因為TCR的新異二聚體的形成可以誘導免疫病理[18]。因此,有必要改進這一策略,生成單克隆T海軍學校規則.
T的分化狀態海軍學校規則與它們的增殖和存活能力成反比。“正確”的T海軍學校規則抵抗末端分化,保持較高的複製潛力(如common- γ chain-的表達)γc, CD132),不易發生凋亡(如PD-1低表達),對體內平衡細胞因子[19]有應答能力,這有利於它們的生存。此外,“正確”的T海軍學校規則表達高水平的分子,促進其歸巢淋巴結(LNs),如CD62L和cc趨化因子受體(如CCR4, CCR7),並在某些炎症條件下保持穩定性或可塑性。此外,在有效的免疫反應後,“正確的”T海軍學校規則堅持並提供保護性免疫。
因為細胞太少,收集了足夠數量的組織相關T細胞海軍學校規則從pbmc中提取TCR基因轉導可能是有問題的。
綜上所述,有力的論據支持了T注冊在自身免疫性關節炎的基礎治療中使用工程T海軍學校規則.臨床試驗表明,該藥物具有安全性、可行性和潛在的治療活性注冊基於此方法的治療,由於與健康組織的交叉反應引起的自身免疫仍然是一個主要的安全問題[20,21]。此外,轉基因T海軍學校規則使用電流的方法通常是中間或後期效應T海軍學校規則[22],它們隻有短期持久性在活的有機體內.
到目前為止,多能幹細胞(PSCs)是唯一能產生大量“正確”T細胞的來源海軍學校規則(23、24)。人誘導的PSCs (iPSCs)可通過多種轉錄因子的轉導從患者的體細胞中輕易生成,並表現出與胚胎幹細胞(ESCs)[25]相同的特征。許多遺傳方法和基於蛋白質的方法已被開發用於生產具有潛在降低風險的iPSCs,包括免疫原性和致瘤性[26]。由於其可塑性和無限自我更新能力的潛力,iPSCs在推進細胞基礎治療領域具有很高的潛力。
我們的實驗室是第一個顯示了Agspecific ipsc - ctl或iPSC-T的發展海軍學校規則可用於癌症和自身免疫性疾病的細胞治療[23,24,27-30],其他研究組也報道了類似的結果[31-33]。我們證明,帶有ag特異性TCR和轉錄因子FoxP3的轉基因iPSCs,以及由Notch信號驅動的分化,可以使iPSCs通過造血和T譜係分化檢查點,導致ag特異性CD4+T的發展海軍學校規則我們開發了一種新的係統來生成穩定的ag特異性iPSC-T海軍學校規則.我們正在進行的研究將驗證該係統,並為有效開發炎症組織相關iPSC-T的方法和機製要求提供新的見解海軍學校規則.一旦這些策略成為可用的,就有可能促進產生對自身免疫性關節炎的耐受性。因此,對T注冊基於免疫療法的自身免疫性關節炎的研究是預期的。
PSCs暴露在許多與其進展有關的信號中。雖然確切的信號還不完全清楚,但已知的部分機製是通過Notch信號來指導t細胞命運的。Notch在進化上是保守的;在許多細胞和組織類型中調控細胞命運的決定。配體與Jagged或Delta-like (DL)家族成員的結合導致蛋白水解裂解和Notch異質二聚體胞內片段的釋放。然後轉位到細胞核允許它的基因表達的調節。具體來說,Notch-1對t細胞命運的建立至關重要。功能喪失導致T細胞發育受阻,B細胞生產增強,而過表達導致B細胞淋巴係統受阻,導致T細胞[34]的產生。然而,Notch信號調節ag特異性PSC-T分化的胞內信號通路海軍學校規則仍然未知。在轉染Notch配體DL1或4的骨髓基質細胞係OP9細胞單分子層上共培養的PSCs顯示出分化為大多數造血係和T細胞[31]的能力。我們的研究將確定在autoag特異性PSC-T發育過程中,Hes1[35]、Runx1[36]和存活[37]通過Notch信號的關鍵調控機製海軍學校規則.
雖然ag特異性的人類iPSC-T海軍學校規則細胞基礎療法可能有很好的治療效果,他們的效率受到需要產生大量這樣的細胞使用複雜和昂貴的限製在體外分化。此外,產生人類iPSCs的時間過長可能會限製其在個體化治療中的應用。或者,我們將使用TCR/FoxP3基因轉導的iPSCs進行基於細胞的治療,它可以分化為自動ag特異性iPSC-T海軍學校規則在活的有機體內抑製自身免疫性關節炎我們將在基因轉導的iPSCs過繼轉移之前或之後進行關節炎誘導。我們將注射Notch激動劑或重組細胞因子(如rIL-7, rFlt3L)來促進在活的有機體內自動ag特異性iPSC-T的開發海軍學校規則.
總之,目前阻礙該領域進展的一個障礙是缺乏一種有效的係統來生成“正確的”autoag特異性T海軍學校規則這可以用於自身免疫性關節炎的細胞療法。我們建議使用PSC-T海軍學校規則以解決這一限製,允許衍生大量穩定的autoag特異性PSC-T海軍學校規則細胞療法。這種方法的開發為自身免疫性關節炎的個性化治療邁出了重要的一步。
該項目部分由國家衛生研究所撥款R01AI121180、R21AI109239和K18CA151798、美國糖尿病協會1-16-IBS-281和賓夕法尼亞衛生部煙草解決基金資助。
- Peres RS, Liew FY, Talbot J, Carregaro V, Oliveira RD,等(2015)類風濕性關節炎中作為甲氨喋呤治療耐藥生物標誌物的調節性T細胞上CD39的低表達。中國生物化學學報(英文版)112:2509-2514。[Ref。]
- 陳敏,蘇偉,林霞,郭誌,王傑等(2013)人牙齦間充質幹細胞過繼轉移通過抑製Th1和Th17細胞和增強調節性T細胞分化改善膠原性關節炎。風濕性關節炎65:1181-1193。[Ref。]
- Hossain DM, Panda AK, Manna A, Mohanty S, Bhattacharjee P, et al. (2013) FoxP3在腫瘤誘導的調節性T細胞中與STAT3作為協轉錄因子。免疫39:1057 - 1069。[Ref。]
- Aschenbrenner K, D 'Cruz LM, Vollmann EH, Hinterberger M, Emmerich J, et al.(2007)對Aire+髓質胸腺上皮細胞表達和呈遞的自身抗原特異性Foxp3+調節性T細胞的選擇。Nat Immunol 8: 351-358。[Ref。]
- Haque R, Lei F, Xiong X, Wu Y, Song J (2010) FoxP3和Bcl-xL協同促進調節性T細胞持久性和預防關節炎發展。關節炎Res Ther 12: R66。[Ref。]
- Hippen KL, Merkel SC, Schirm DK, Nelson C, Tennis NC,等(2011)抑製移植物抗宿主病的人誘導調節性T細胞的生成和大規模擴增。中華醫學雜誌移植雜誌11:1148-1157。[Ref。]
- van Herwijnen MJ, Wieten L, van der Zee R, van Kooten PJ, Wagenaar-Hilbers JP等(2012)識別無處不在的應激誘導性自我抗原的調節性T細胞是自身免疫性關節炎的長期抑製因子。美國科學院學報109:14134-14139。[Ref。]
- Wright GP, Notley CA, Xue SA, Bendle GM, Holler A,等(2009)重定向原代調節性T細胞過繼治療可抑製關節炎的抗原特異性。美國國家科學院學報106:1908 -19083。[Ref。]
- Sela U, Olds P, Park A, Schlesinger SJ, Steinman RM(2011)樹突狀細胞誘導抗原特異性調節性T細胞,可預防移植物抗宿主病並在小鼠中持續存在。中華醫學雜誌208:2489-2496。[Ref。]
- Bacher P, Kniemeyer O, Schonbrunn A, Sawitzki B, Assenmacher M, et al.(2013)人調節性T細胞抗原特異性擴增作為對粘膜真菌的主要耐受機製。黏膜免疫7:916-928。[Ref。]
- Nguyen TL, Sullivan NL, Ebel M, Teague RM, DiPaolo RJ(2011)抗原特異性tgf - β誘導的調節性T細胞分泌趨化因子,調節T細胞運輸,並抑製持續的自身免疫。中華免疫學雜誌187:1745-1753。[Ref。]
- Van Belle TL, Ling E, Haase C, Bresson D, Urso B等(2013)NKG2D阻斷促進病毒誘導糖尿病模型中抗原特異性treg預防糖尿病。中國機械工程學報40:66-73。[Ref。]
- Takiishi T, Korf H, Van Belle TL, Robert S, Grieco FA,等。(2012)利用轉基因乳酸乳球菌恢複小鼠的抗原特異性耐受逆轉自身免疫性糖尿病。J臨床投資122:1717-1725。[Ref。]
- Vogtenhuber C, O 'Shaughnessy MJ, Vignali DA, Blazar BR(2008)體外多克隆刺激CD4+CD25+ T細胞培養中具有抑製功能的CD4low/negCD25+ T細胞的生長。J免疫雜誌181:8767-8775。[Ref。]
- Sharma MD, Huang L, Choi JH, Lee EJ, Wilson JM,等(2013)Foxp3+ T輔助細胞的一個固有雙功能亞群受轉錄因子eos控製。免疫38:998 - 1012。[Ref。]
- Perro M, Tsang J, Xue SA, Escors D, Cesco-Gaspere M,等。(2010)通過慢病毒TCR基因轉移生成多功能抗原特異性人t細胞。基因ther17: 721-732。[Ref。]
- Porter DL, Levine BL, Kalos M, Bagg A, June CH(2011)嵌合抗原受體修飾的T細胞在慢性淋巴細胞白血病中的作用。中華醫學會醫學雜誌361:725-733。[Ref。]
- Bendle GM, Linnemann C, Hooijkaas AI, Bies L, de Witte MA,等(2010)T細胞受體基因治療小鼠模型中致死性移植物抗宿主病。Nat Med 16: 565-570。[Ref。]
- Gratz IK, Truong HA, Yang SH, Maurano MM, Lee K,等。(2013)前沿:記憶調節性T細胞需要IL-7而不是IL-2來維持外周組織。中華免疫學雜誌19:4483-4487。[Ref。]
- Kuball J, Dossett ML, Wolfl M, Ho WY, Voss RH,等。(2007)促進引入人類T細胞的TCR鏈的匹配配對和表達。血109:2331 - 2338。[Ref。]
- van Loenen MM, de Boer R, Amir AL, Hagedoorn RS, Volbeda GL, et AL .(2010)混合T細胞受體二聚體具有潛在的有害新反應。美國科學院學報107:10972-10977。[Ref。]
- Kim YC, Zhang AH, Su Y, Rieder SA, Rossi RJ等。(2015)工程抗原特異性人調節性T細胞:免疫抑製fviii特異性T細胞和b細胞反應。血125:1107 - 1115。[Ref。]
- 趙斌,李曉燕,李曉燕,等(2012)多能幹細胞調節性T細胞的構建及自身免疫的預防。中華免疫學雜誌(英文版)[Ref。]
- 雷鋒,黑克瑞,熊旭,宋健(2012)誘導多能幹細胞向T淋巴細胞定向分化。J Vis Exp e3986。[Ref。]
- Kim JB, Sebastiano V, Wu G, Arauzo-Bravo MJ, Sasse P,等(2009)oct4誘導成人神經幹細胞的多能性。細胞136:411 - 419。[Ref。]
- 趙濤,張楠楠,榮智,徐燕(2011)誘導多能幹細胞的免疫原性。自然474:212 - 215。[Ref。]
- 雷鋒,Haque R, Weiler L, Vrana KE,宋傑(2009)誘導多能幹細胞的T係分化。細胞免疫260:1-5。[Ref。]
- 雷鋒,趙斌,黑可瑞,熊旭,預算L,等。(2011)多能幹細胞腫瘤抗原特異性T淋巴細胞的體內編程促進癌症免疫監測。巨蟹座版71:4742-4747。[Ref。]
- Haque M, Song J, Fino K, Sandhu P, Wang Y,等。(2016)基因工程多能幹細胞在小鼠黑色素瘤免疫治療中的應用。細胞移植25:811-827。[Ref。]
- Haque M, Song J, Fino K, Sandhu P, Song X,等。(2016)幹細胞來源的組織相關調節性T細胞改善自身免疫的發展。科學報告6:20588。[Ref。]
- Themeli M, Kloss CC, Ciriello G, Fedorov VD, Perna F,等(2013)誘導多能幹細胞生成腫瘤靶向人T淋巴細胞用於癌症治療。納特生物科技31:928-933。[Ref。]
- Vizcardo R, Masuda K, Yamada D, Ikawa T, Shimizu K,等(2013)成熟CD8(+) T細胞衍生的iPSCs再生人腫瘤抗原特異性T細胞。細胞幹細胞12:31 -36。[Ref。]
- Saito H, Okita K, Chang AE, Ito F(2106)誘導多能幹細胞產生的CD8+ T細胞過繼轉移引發大腫瘤的消退和免疫記憶。巨蟹座版76:3473-3483。[Ref。]
- Dervovic DD, Liang HC, sers JL, Elford AR, Mohtashami M,等(2013)體外生成CD8 T細胞選擇的細胞和分子要求揭示了notch的作用。中華免疫學雜誌(英文版)[Ref。]
- Wendorff AA, Koch U, Wunderlich FT, Wirth S, Dubey C, et al. (2010) Hes1是淋巴細胞發育和轉化中典型Notch信號的關鍵但依賴於環境的調節因子。免疫33:671 - 684。[Ref。]
- Guo Y, Maillard I, Chakraborti S, Rothenberg EV, Speck NA(2008)核心結合因子是自然殺傷細胞發育所必需的因子,並在t細胞特異化過程中與Notch信號協同作用。血112:480 - 492。[Ref。]
- 雷鋒,宋傑,哈克瑞,熊旭,方東,等(2013)survivin轉基因表達可補償ox40缺乏在驅動Th2發育和過敏性炎症中的作用。免疫雜誌43:1914-1924。[Ref。]
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文章類型:迷你回顧
引用:宋建勳(2016)幹細胞衍生的調節性T細胞用於關節炎的治療。Autoimmun感染2(3):doi http://dx.doi。org/10.16966/2470 - 1025.119
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