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Adegun可1 *Fajemilehin SOK1Ajayi DD2Ojo喬1
1 埃基蒂州立大學動物生產和衛生科學係,尼日利亞阿多埃基蒂2 尼日利亞埃基蒂州立大學教學醫院化學病理科
*通訊作者:阿德貢MK,埃基蒂州立大學動物生產和健康科學係,尼日利亞阿多埃基蒂;電子郵件:patrickikelomo@yahoo.com
背景:在尼日利亞的半濕潤地區,缺乏關於飼喂不同比例的草和精料補充劑對Yankasa公羊血液成分的影響的信息。
方法:對20隻平均體重為21.33±0.50 Kg的1歲延薩公羊進行了血液和生化成分的測定。基礎飼糧黍最大采用完全隨機區組設計,分別飼喂體重為0(處理1,T1)、0.5(處理2,T2)、1.0(處理3,T3)、1.5(處理4,T4)和2.0%(處理5,T5)的公羊飼糧。每周提供的飼料量根據前一周的平均體重進行調整。
結果:T5充血細胞容積(PCV)和紅細胞均值分別為32.08±0.3%和10.17±0.21 × 106µL)均顯著(p<0.05)高於其他處理,其中T1值最小。平均紅細胞體積、平均紅細胞血紅蛋白(MCH)和平均紅細胞血紅蛋白濃度也有相同的趨勢。T1與T5間白細胞值差異無統計學意義(p>0.05)。
生化指標顯示,除T3處理TG值與對照無差異外,T1處理總蛋白(TP)、白蛋白(alb)、球蛋白(glb)、甘油三酯(TG)和總膽固醇(TC)均顯著降低。治療1記錄了高密度脂蛋白的增加,但與其他治療相比,在統計學上(p>0.05)觀察到相似的值(45.17±0.66 mg dl-1)。
結論:血液生化指標的健康狀況表明,以2.0%公羊體重的精料混合料為最適宜的添加水平。
生物化學;血液學;黍最大;Yankasa公羊;飼養場
動物源性食品是人類飲食中重要的營養來源,在任何時候都不能忽視動物源性食品的質量和數量。肉類是一種營養豐富的食物,提供優質蛋白質、必需礦物質和維生素,如鐵、鋅、維生素B12ω -3[2],是一種很好的人類食用食物來源可以從雞,家禽,野生和養殖動物中獲得。在這些被培育的動物中,羊很重要,因為它的世代間隔短,而且沒有與它的肉有關的宗教禁忌。
Yankasa羊的品種傳統上並不在尼日利亞半濕潤的南部地區管理,而是在尼日利亞北部和中北部發現的一種肉用品種,據信是由一個共同的祖先進化而來的土著西非侏儒羊。該品種可以在半濕潤的南方環境中進行管理,在那裏它可以用來增加該地區的動物蛋白質供應,因為它的胴體重量比WAD羊大[4,5]。
在尼日利亞,綿羊大多采用半集約化和粗放式的飼養方式,由於飼料供應的季節性、惡劣的天氣條件和管理製度[6],影響了綿羊的生產效率,造成經濟損失。為了有效地生產動物蛋白,家畜養殖戶已經開始采用集約化管理係統,通過禁閉飼養動物,提供足夠的營養,住所和可持續的健康管理,以保持動物的良好狀態,並優化生產力[7]。集約化的綿羊生產為飼養場大規模生產公羊提供了一個主要的吸引力,特別是在節日期間出售,它們的價格非常高。批量飼養的主要好處是對牲畜的生產和銷售有更大的控製和靈活性。
環境條件、營養和管理影響生產目的飼養動物的健康狀況,通過對其血液樣本進行血液學分析可以了解其健康狀況[9,10]。眾所周知,血液對生物體的生命至關重要,因為它是一種媒介,通過它營養物質被輸送到身體係統的各個部分。血液分析[11]是一種評估動物臨床和營養狀況的簡便快捷的方法。血液學參數是監測和評價[12]動物健康和營養狀況的重要和可靠的媒介。血液的各種功能是由血液成分(血液學和生化成分)的個體和集體作用來實現的。
血液學檢測已廣泛應用於動物營養攝入相關疾病的診斷。從血液參數中獲得的信息可以充實體檢,並與病史一起為醫學判斷提供良好的依據。此外,它將有助於確定組織和器官損傷的程度,動物防禦機製的反應,並有助於診斷與所食用飼料相關的血液學問題。從實驗動物獲得的值為與健康動物的正常值進行比較提供了有用的工具[14,15]。
盡管家養動物的正常血液參數有相當多的信息,但這些值是在不同環境和管理條件下飼養的外來品種的血液參數。在尼日利亞半濕潤地區,飼養方式對綿羊血液代謝產物影響的研究大多集中在WAD綿羊上。因此,本研究的目的是研究飼養不同比例的燕沙公羊的一些血液生化成分黍最大,尼日利亞西南部集約飼養場下的精料混合
實驗地點
該實驗是在尼日利亞西南部Ado Ekiti州立大學教學和研究農場的小反芻動物區進行的。Ado Ekiti位於緯度07之間03.11511經度0501311711E.平均濕度72%。屬熱帶氣候,氣溫20℃-28℃,4 - 10月降水呈雙峰分布,6 - 9月為高峰,8月為間歇期。一般來說,亞濕潤地區的旱季在11月至3月之間。該地區平均降水量為1367毫米3..
實驗動物及其管理
從尼日利亞中北部誇拉州阿賈斯-伊波反芻動物市場購買了20頭平均體重為21.33±0.50 Kg的一歲揚卡薩公羊。在實施實驗方案之前,公羊按照NAPRI[17]方法隔離30天。用伊維菌素注射液治療動物體外寄生蟲,用阿苯達唑丸除蟲以治療內寄生蟲,同時肌肉內注射土黴素長效廣譜抗生素作為預防細菌感染的措施。還接種了反芻獸疫(PPR)疫苗,以預防小反芻獸疫感染。在實驗開始前,將實驗動物分為5個處理組,進行2周的預處理,使其適應實驗飼糧和環境。提供了水隨意.
實驗設計
公羊隨機分為5個治療組,每組4隻,采用隨機完全塊設計(RCBD)。實驗日糧包括黍最大按公羊體重的3%飼喂草為基礎飼糧。按表1所示配製精料飼糧,作為基礎飼糧的補充,分別以試驗1、2、3、4和5試驗公羊體重為0、0.5、1.0、1.5和2.0%的水平替代基礎飼糧。每周提供的飼料量根據前一周的平均體重進行調整。試驗期84 d。
參數 | 濃度(占體重的百分比) | ||||
0 | 0.5 | 1.0 | 1.5 | 2.0 | |
DM CP CF EE 灰 NFE 通用電氣(Kcalkg) |
72.28 9.42 31.58 3.30 11.36 44.34 2280 |
80.11 11.64 29.11 5.76 9.48 44.01 2600 |
82.62 12.92 29.01 5.40 8.66 44.01 2811 |
85.71 14.52 27.46 5.86 8.01 44.24 2901 |
86.11 14.97 26.78 6.06 7.54 44.65 3028 |
表1:的近似組成黍最大-濃縮混合飼料喂給揚卡薩公羊。
幹matter-DM;原油protein-CP;原油fibre-CF;醚extract-EE;無氮提取物- nfe;energy-GE總值。
血液采集與分析
在28日上午7點至9點之間,從每隻動物的右頸靜脈中采集了平均8毫升的血液樣本th56歲th和84年th實驗的日子。收集的約5ml血液樣本被倒入標記的乙二胺四乙酸乙二胺(EDTA)瓶(肝素化試管)中,用於血液學研究,其餘的則倒入標記的塑料試管中,用於血清代謝物測定。根據Coles等所描述的方法測定填充細胞體積(PCV)、白細胞(WBC)和WBC(中性粒細胞、嗜酸性粒細胞和淋巴細胞)的差異計數。平均紅細胞體積(MCV)、平均紅細胞血紅蛋白(MCH)和平均紅細胞血紅蛋白濃度(MCHC)計算方法如下:
MCV (fl) =紅細胞壓積(PCV) × 10rbc mm3
MCH (pg) = Hb /100ml血× 10rbc mm3
MCHC % = g/100ml血中Hb × 10血細胞壓積(PCV)
總蛋白、白蛋白和其他血清代謝物使用市售診斷試劑盒按所述方法測定[19-21]。
統計分析
生成的數據采用SAS[22]的通用線性模型(GLM)程序進行方差分析(ANOVA)。均值采用Duncans Multiple Range Test (DMRT)進行分離。
測試成分的近似組成
分析了精礦混合料的大致組成黍最大飼料如表2所示。濃縮物幹物質(92.15 g 100g-1)高於飼料(72.28 g 100g)-1).粗蛋白質(CP)成分的精料混合(16.65 g 100g-1)顯著高於牧草CP (9.42 g 100g)-1e,精礦總能(GE)值(3228千卡公斤)-1)超過牧草的GE值(2280 Kcal kg)-1).然而,粗纖維(CF) (31.58 g 100g-1)均大於精料混合料的CF (26.48 g 100g-1)[23]。
參數 | 黍最大 | 集中注意力 |
DM CP CF EE 灰 NFE 總E0(千卡/公斤) |
72.28 9.42 31.58 3.30 11.36 44.34 2280 |
92.15 16.65 26.48 4.23 7.6 45.04 3228 |
表2:的近似(%)成分黍最大-濃縮混合飼料喂給揚卡薩公羊。
dm -幹物質、cp -粗蛋白質、cf -粗纖維、ee -醚提取物、nfe -無氮提取物
血液學的特點
表3顯示了用於本研究的實驗動物的血液學反應。各治療組細胞堆積體積(PCV)均值差異有統計學意義(p<0.05)。飼喂精料飼糧的公羊PCV值為28.3±0.58%,飼喂2.5%黍最大0.5%精料混合(T2)至32.08±0.30%公羊,飼喂1.0%黍最大和2.0%精料混合料(T5)相比,飼糧為3.0%的公羊PCV值為23.5±0.25%黍最大和0%濃縮混合物(T1)。研究動物的紅細胞和血紅蛋白也存在顯著差異(p<0.05)。紅細胞計數(RBC)在T5時最高(10.17±0.21)6μ), T1時最低(7.78±0.16)6µ)。T2 ~ 5期血紅蛋白(Hb)值(11.38±0.62、11.65±0.44、11.81±0.52和12.93±0.51g dl-1均顯著(p<0.05)高於對照日糧(8.05±0.57g dl)-1).白細胞(WBC)值為9.07±1.44 × 109l-1公羊飼喂10.73±0.49 × 10的對照飼糧6l-1T5無顯著性差異(p>0.05)。公羊的平均血紅蛋白紅細胞濃度(MCHC)在T1時(18.9±1.46%)顯著降低(p<0.05),而在T5時(41.42±1.58%)顯著升高。平均紅細胞值(MCV)和平均紅細胞血紅蛋白(MCH)也與t2、T3相同(2%)黍最大和1%濃縮混合物)和T4 (1.5%黍最大MCV分別為28.18±0.63、28.28±2.84和28.81±4.67 fl, MCH分別為11.33±1.47、11.50±1.56和12.01±1.09 pg,差異有統計學意義(p<0.05)。
參數 | 濃度(公羊體重百分比) | ||||
0 | 0.5 | 1.0 | 1.5 | 2.0 | |
PCV (%) 加拿大皇家銀行(106µL) Hb (g / dl) 白細胞(109 / L) 中性粒細胞(%) Lymp (%) 莫諾(%) 曙紅(%) MCHC (%) MCV (fl) 婦幼保健(pg) |
23.5±0.25c 7.78±0.16c 8.05±0.57b 9.07±1.14 57.11±2.12 32.78±0.59 4.44±0.44 2.22±0.22 18.90±1.46c 18.21±1.71b 6.26±0.50b |
28.30±0.58b 9.96±0.13b 11.38±0.62一個 10.21±0.39 58.0±3.05 32.55±1.42 4.44±0.44 2.44±0.44 32.21±2.16b 28.18±0.63一個 11.33±1.47一個 |
28.58±0.51b 9.88±0.26b 11.65±0.44一個 9.78±1.78 60.33±2.99 32.89±3.73 6.46±0.79 2.44±0.44 33.20±1.42b 28.28±2.84一個 11.50±1.56一個 |
28.33±1.31b 10.17±0.21一個 11.81±0.52一個 10.03±0.75 59.66±2.26 29.00±1.89 4.88±0.29 3.22±0.78 33.34±1.58b 28.81±4.67一個 12.01±1.09一個 |
32.08±0.30一個 10.02±0.02一個 12.93±0.51一個 10.73±0.49 61.0±2.50 30.01±0.40 5.99±0.88 2.44±0.44 41.42±1.58一個 32.14±0.81一個 12.90±0.74一個 |
表3:集約飼養場大精混合飼養的延卡公羊血液學特征。
同一行上標a、b、c不同的均值有顯著差異
填充細胞體積- pcv;紅細胞- rbc;血紅蛋白,白細胞- wbc
表4為飼喂延卡公羊血清生化指標黍最大集中混合。除HDL和LDL外,各組血清化學成分均有顯著差異(p<0.05)。TP和Alb均隨精料摻量的增加而增加,但在處理4時,當精料摻量為1.5時,Alb略有下降。在其他參數中也出現了幾乎類似的模式。各組間差異有統計學意義(P<0.05)。
參數 | 濃度(體重百分比) | ||||
0 | 0.5 | 1.0 | 1.5 | 2.0 | |
TP g dl-1 Al g dl-1 Glg dl-1 TC mg dl-1 TG mg dl-1 高密度脂蛋白毫克dl-1 低密度脂蛋白-1 |
5.22±0.15c 3.04±0.03b 2.18±0.07b 47.78±0.44b 15.22±0.11c 45.17±0.66 10.77±0.59 |
6.39±0.18b 3.30±0.10一個 3.08±0.11一個 64.44±1.83一個 17.33±0.19一個 44.55±1.36 12.44±0.62 |
6.41±0.38b 3.35±0.80一個 3.06±0.17一個 69.77±0.67一個 15.78±0.68c 43.88±0.73 12.89±0.40 |
6.44±0.19b 3.34±0.06一個 3.10±0.03一個 67.22±1.28一個 16.44±1.16b 42.33±0.67 13.55±0.11 |
6.77±0.12一個 3.41±0.04一個 3.16±0.12一個 69.77±2.32一個 16.77±0.29b 43.44±0.62 13.66±0.19 |
T可以4:飼養延卡公羊血清生化測定黍最大-精料混合在集約飼養場。
同一行上標a、b、c不同的均值差異顯著。
總protein-TP;globumin-Alb;globulin-Glb;總cholesterol-TC;Triglyceride-TG;高密度脂蛋白;低密度脂蛋白
試驗飼糧中白蛋白和球蛋白的含量也存在顯著差異(p<0.05)。白蛋白值為3.04±0.03g 100ml-1至3.41±0.04g 100ml-1在治療1到5。球蛋白值也從2.18±0.07g 100ml不等-1至3.16±0.12g 100ml-1在治療1-5。總膽固醇為47.78±0.44 ~ 69.77±2.32g 100ml-1治療2 ~ 5無顯著差異,但治療1顯著降低(p>0.05)。甘油三酯值為15.22±0.11 ~ 16.77±0.29g 100ml-1治療1、3顯著降低(p<0.05)。
粗蛋白質(CP)的組成部分黍最大(Pm)用於本研究(9.42 g kg-1)小於12.17 g kg-1[24]但均大於5.87 g kg-1Oluboyede, et al. [25].;然而,CP值高於小反芻動物推薦的臨界水平7.7%的正常範圍(ARC 1985)。Pm的粗纖維(CF) (31.58 g kg-1)低於CF (37.47 g kg-1), Fadiyimu, et al. [24].;此外,本研究的無氮提取物(NFE)值為44.35 g kg-1)均高於34.47 g kg-1由上述兩位研究者得出。這些差異的原因可能是由於年齡和收獲季節,這可能會影響近似分析。
粗蛋白(16.65 g kg-1)精料飼糧含量高於生長小反芻動物[26]最低推薦值12%。本試驗所用精料的CP含量高於包括Pm在內的大部分禾草CP含量,但低於CP的20.11g kg-1用於補充關在短棘草牧場上的羊羔[27]。試驗1 ~ 5處理CP值在生長綿羊[28]推薦的9 ~ 14%範圍內。精料通常指CF低於18%的高品質低纖維日糧(Van 2006),但CF為26.97g kg-1至29.11g kg-1以中等CP和高NFE的精料混合可使其成為中等CP的高能量補充劑[29]。
血液學性狀,特別是PCV和Hb與[30]的營養狀況相似。在本研究中獲得的PCV值中,隻有飼喂對照日糧的公羊的PCV值為23.5%,低於健康綿羊[30]報告的正常範圍(27.0%-45.0%)。其他飼喂不同濃度精料的公羊,其值均在此範圍內;飼喂最高水平精料(處理5)的公羊PCV水平最高。Isaac et al.(2013)強調了PCV作為所有動物和人類氧氣運輸和養分吸收的參數的重要性。在本研究中,公羊精料飼料的PCV值較高,表明飼糧的營養狀況較好。
一般來說,Hb濃度的升高與抗感染能力的增強有關,低濃度表明營養不良和高感染易感性[31,19]。血紅蛋白具有將氧氣輸送到動物組織中,氧化攝取的食物,從而為其他身體功能釋放能量,並將動物體內的二氧化碳輸送出去[32]的生理功能。這意味著,在本研究中,隨著精料的增加,血紅蛋白水平的提高將提高動物組織的高灌注率,並充分去除二氧化碳,從而改善動物健康和產量。這與Fasae等人[33]的研究結果一致,Fasae等人的研究報告稱,隨著飼用豆類增加玉米穗軸的添加,Hb水平增加。
白細胞及其分化細胞的主要功能是抵抗感染,通過吞噬作用保護機體免受外來生物的入侵,在免疫反應中產生或運輸和分配抗體。對照組飼糧WBC值較低的公羊發病風險較高,而精料飼糧WBC值較高的公羊在吞噬過程中能夠產生抗體,對疾病[32]具有較高的抵抗力。此外,在動物日糧中引入精料混合飼料,將增強對當地環境和疾病流行條件的適應性[34]。WBC值為9.07±1.14 ~ 10.73±0.49 × 109 L-1)均在正常值4 ~ 12 × 10範圍內9l-1為羊[35]。這也與Bello和Tsado等人的工作一致,他們報告的值為7.0- 12.9 × 109 L-1以家禽糞便為基礎的分級飼糧。
然而,本研究獲得的RBC值(9.96-10.17 × 106在Campbell等人報告的正常範圍內,[37]報告的範圍為9-11 ×106μ L在他們的研究中。紅細胞正常值與無溶血性貧血和紅細胞生成抑製有關,而紅細胞水平降低是動物[38]易患貧血相關疾病的必要條件。
生化參數與機體的各種功能有關,生化參數的缺乏會導致機體功能的損害,從而導致機體結構和生理異常[39]。Tumbleson, et al.[40]報道,肝髒合成血清總蛋白的所有成分,除了由脾髒產生的免疫球蛋白。這些濃度的降低是肝功能障礙的跡象。本研究表明,飼喂最高水平精料混合物的公羊血清中總蛋白水平較高,這意味著動物的蛋白質合成更好,因為飼糧中粗蛋白質水平最高。這與Hoffman, et al.[41]的研究結果相似,他們在荷斯坦小母牛飼喂15% CP比8% Ross JG時記錄了更高的血清總蛋白和白蛋白,[42]證實了即將到來的蛋白質缺乏的最敏感的生化指標是血清白蛋白的下降。此外,Altman等[43]報道總白蛋白讀數低於正常生理值通常提示低白蛋白血症,低白蛋白血症可能是由於蛋白質攝入不足、白蛋白合成不足、蛋白質分解過多、慢性肝病或饑餓以及慢性胃腸道疾病幹擾蛋白質消化吸收所致。本研究的平均球蛋白值高於Carlos等人在Morada Nova羊血液分析中報道的[44],但略低於Kaneko等人報道的健康羊[45]。這三項研究的差異可能是由於不同的飲食攝入和環境。
這項研究顯示TG的範圍在15.22和17.33 mg dl之間-1.這一水平與Sureshkumar和Vasanthankumar等人報道的[46]相似,其值範圍為13.34至18.05 mg dl-1在不同生理階段飼喂精料飼糧。此外,飼喂高精料飼料的公羊甘油三酯水平顯著升高,這與Sarwar等人[47]的研究結果一致,Sarwar等人報告說,精料處理組的甘油三酯水平顯著高於僅飼喂飼料的動物。公羊精料飼糧中總膽固醇水平的提高也與其他作者的研究結果一致,他們記錄了精料飼糧中血清生化膽固醇水平高於單用飼料飼糧[46-48]。然而,膽固醇水平在正常範圍內,這意味著實驗動物的肉不會導致消費者膽固醇升高。
最後,在本研究中,用精料混合飼料喂養的公羊的血清中觀察到HDL水平略低但不顯著,這表明補充飼料不會對動物體內的HDL水平產生負麵影響。HDL是一種保護性膽固醇。
血液學和生化指標表明,在克飼糧中添加精料混合物優於單飼草飼糧。總體而言,2.0%公羊體重的精料組合在大部分血液學和生化指標上優於其他處理組。
沒有一個
作者感謝Ilori Benjamin先生和Omonayin Joseph先生在數據收集方麵的協助。
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文章類型:研究文章
引用:Adegun MK, Fajemilehin SOK, Ajayi DD, Ojo JO(2018)飼養不同水平Panicum的Yankasa公羊的血液生化特征最大限度的集中尼日利亞西南部集約化飼養場混合。動物科學研究2(2):dx.doi.org/10.16966/2576-6457.113
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